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ニセプライフ ®6FF (NTA) ニッケルキレートアガロースクロマトグラフィー樹脂

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タンパク質、核酸、ポリペプチドの精製処理
ニセプライフ ®6FF (NTA) ニッケルキレートアガロースクロマトグラフィー樹脂 クロマトグラフィー媒体

ニッケルキレートアガロースクロマトグラフィー樹脂

ニセプライフ6FF(NTA)

ニセプライフ ® 6FF (NTA) ニッケルキレートアガロースクロマトグラフィー樹脂 製品プロファイル:

Niキレートアガロースクロマトグラフィー  (NTA)は6FFアガロース培地上でイミノジ酢酸を結合し、その後Ni2+イオンをキレート化して  アフィニティークロマトグラフィー媒体 広く使用されているのは  タンパク質の加工 、  核酸  そして  ポリペプチド精製  下流の  バイオファーミングとバイオエンジニアリング

 

20200804083655

ニセプライフ ® 6FF (NTA) ニッケルキレートアガロースクロマトグラフィー樹脂 樹脂パラメータ:

樹脂コード ニセプライフ ® 6FF(NTA)
外観 球状ゲルビーズ
粒子サイズ(平方メートル) 45锝™165
マトリックス セプライフ6FF
流量(cm/h) 370円
圧力(MPa) 0.3
イオン結合能 (Ni2+ umol/ml ): ~15
pH安定性 3〜13(長期)、2〜14(短期、CIP)
応用 Hisタグタンパク質の精製
化学的安定性 水緩衝液、0.1M NaOH、0.01M HCl、8Mで安定   尿素


ニセプライフ ® 6FF (NTA) ニッケルキレートアガロースクロマトグラフィー樹脂試験手順:

1.カラムパッキング
すべての材料と試薬を室温にし、初期バッファーと溶出バッファーを準備します。
2.均衡
導電率、pH、その他のパラメータが変化しなくなるまで、初期緩衝液の2~5倍のベッドボリュームでバランスをとります。
3.サンプルのロード
(1)サンプルは通常、pH6~8の初期緩衝液に溶解され、ローディング緩衝液のpHを上げるとローディング量を増やすことができます。
(2)緩衝液にはEDTAやクエン酸を含んではならず、メルカプトエタノールやDTTなどの還元剤も避けるのが最善です。
(3)一般的に用いられる緩衝液としては、10~100mmol/Lリン酸ナトリウム緩衝液、20~200mmol/Lトリス塩酸緩衝液などがある。
(4)イオン交換を排除するために、通常、緩衝液に0.15~0.5mol/Lの塩化ナトリウムを添加する。
(5)ニッケルキレートアガロースゲルを初めて使用する場合は、初期緩衝液として50mmol/L PBS(50mmol/L NaH2PO4、0.5mol/L NaCl、pH7.4)を使用することを推奨します。
4.溶出
溶出は一般的に以下の方法に分けられます。
(1)pH溶出の低減:ほとんどのタンパク質はpH 6〜4(pH 3〜4でも可)で溶出され、緩衝液は酢酸ナトリウム、クエン酸、リン酸緩衝液系になります。
(2)競合溶出:金属イオンに親和性のある競合物質の濃度を直線的に増加させるか、または増加させる(例:0~0.5mol/Lイミダゾール、0~50mmol/Lヒスチジン、0~2mol/L NH4Cl)。
(3)キレート剤溶出:EDTAやEGTAなどのキレート剤は金属イオンと反応してタンパク質を溶出させることができるが、この方法では異なるタンパク質を分離することができず、タンパク質の吸着に影響を与え、融合タンパク質を固定することができなくなる。
備考:
(1)初めて使用する場合、溶出に必要なイミダゾールの濃度が不明な場合は、最初の緩衝液に10mmol/L、20mmol/L、50mmol/L、100mmol/L、200mmol/L、500mmol/Lを加えることをお勧めします。イミダゾールはそれぞれ低濃度から高濃度の順に溶出・回収され、溶出結果はSDS-PAGE電気泳動によって同定されました。
(2)イミダゾールはアルカリ性であり、対応する緩衝液を調製した後、HClでpHを調整する。
(3)pH溶出を下げてキレート剤を溶出させると金属イオンが脱落し、次回使用する前に金属イオンを再度キレート化する必要がある。
(4)条件に応じて、イミダゾールグラジエント直線溶出を実施し、好ましい溶出条件を決定することができる。
上記の溶出方法では、イオン交換を排除するために、150~500 mmol/L の NaCl をバッファーに添加する必要があります。
5.再生
(1)ゲルは繰り返し使用した後、またはキレート金属イオンを交換する必要がある場合は、ニッケルを除去して再生する必要があります。ニッケル除去方法:まずカラムを5~10ベッドボリュームの蒸留水で洗浄し、次にカラムを5~10ベッドボリュームの100 mmol/L EDTAで洗浄し、最後に2~3ベッドボリュームの0.5 mol/L NaClを使用して残留EDTAを洗い流します。
(2)複数回使用したカラムは、通常、ニッケル除去後に洗浄する必要があります。洗浄方法:カラムを0.1〜1.0mol/L NaOHで逆流させ、50cm / hで1〜2時間維持すると、強い不純物を除去できるだけでなく、熱源も除去できます。
(3)洗浄後の金属イオンの再キレート化。キレート化法:まず、ニッケル除去後のカラムを2~5ベッドボリュームの蒸留水で完全に平衡化し、次に0.1~0.3mol/Lの金属塩溶液を使用して5~10ベッドボリュームを通し、金属イオンをキレート化する。5~10ベッドボリュームの蒸留水ですすぎ、キレート化されていない金属イオンを除去する。
6.CIP
(1)イオン交換により吸着されたタンパク質の除去:ベッド容量の2~3倍の量を2mol/LのNaCl溶液で洗い流した。
(2)疎水性の強いタンパク質や脂質等の除去:ベッド容量の4倍量を70%エタノールまたは30%イソプロパノールで洗い流した。
(3)沈殿したタンパク質、疎水性タンパク質の除去:参照ゲル再生工程。
7.保管
密封し、4~30℃(保存溶液に20%エタノールを含む)で乾燥、換気、清潔、凍結せずに保存します。使用済みのカラムは4~8℃、20%エタノール溶液で保存します。

 

注意:
(1)サンプルとNiの寿命 ®6FF (NTA) は溶出バッファーで平衡化してからクロマトグラフィーカラムに送る必要があります。
(2)柱床は平らで、溝や気泡がない状態にしてください。そうでない場合は再度設置する必要があります。
(3)使用時には、カラムと緩衝液の温度が同じであることを確認し、カラムベッド内での気泡の発生を避け、精製効果に影響を与えないようにする。
(4)溶出プロセス中の流速は厳密に制御する必要があり、速すぎないようにする必要がある。
(5)充填中および溶出プロセス全体を通じて、シリンダー表面の乾燥が防止される。

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